Implementación de la técnica de producción de embriones in vitro en ovinos en Costa Rica
DOI:
https://doi.org/10.47633/pg2man55Palabras clave:
ovino, óvulo, embriones, blastocistos, in vitroResumen
El departamento de Reproducción Animal de la Escuela de Medicina Veterinaria de la Universidad Nacional de Costa Rica implementó la técnica de producción de embriones ovinos in vitro. Se colectaron 341 óvulos a partir de 63 ovarios obtenidos de planta de cosecha y transportados al laboratorio en durante la hora posterior al sacrificio. Los folículos fueron aspirados en tubos con medio de colecta de óvulos (OPU, Bioscience®) y los óvulos con al menos una capa completa de células del cúmulus (216/341) fueron colocados en medio de maduración (IVM, Bioscience®) e incubados a 38.8°C por 22-24 h, en atmósfera húmeda y CO2 al 5%. El 91.20% (197/216) de los óvulos madurados con buena expansión del cúmulus y citoplasma homogéneo, fueron fecundados con 1-2 x106/ml de semen en medio de fertilización (IVF, Bioscience®) por 16-22 h. Seguidamente, los cigotos fueron desnudados, transferidos a medio de cultivo (IVC, Bioscience®), e incubados en una atmósfera con baja presión de oxígeno. Después de 24 h de cultivo, la tasa de división celular (clivaje) fue 57.36% (113/197). A los 7 días de cultivo la tasa de blastocistos fue 20.81% (41/197) en relación con los óvulos con adecuada maduración y 36.28% (41/113) en relación de los óvulos fecundados (clivaje). Este estudio es un primer paso crucial hacia la producción de embriones ovinos en Costa Rica, y abre nuevas oportunidades para potenciar la mejora genética y productiva de pequeños rumiantes. Además, fortalece la formación académica y el desarrollo de investigaciones estratégicas para solventar necesidades prioritarias del sector agropecuario nacional.
Descargas
Referencias
Referencias
Arroyo, J. (2011). Reproductive seasonality of sheep in Mexico. Tropical and Subtropical Agroecosystems, 14, 829–84. https://www.scielo.org.mx/scielo.php?pid=S1870-04622011000300001&script=sci_abstract&tlng=en
Fu, J., Wang, X. J., Wang, Y. W., Sun, J., Gemzell-Danielsson, K., & Sun, X. X. (2009). The influence of early cleavage on embryo developmental potential and IVF/ICSI outcome. Journal of Assisted Reproduction and Genetics, 26(8), 437–441. https://doi.org/10.1007/s10815-009-9342-6
Hansen, P. J., Maia, T., & Rivera, R. (2023). In vitro production of bovine embryos. Dept. of Animal Sciences, Bovine Embryo Lab, University of Florida. Retrieved November 6, 2024, from https://animal.ifas.ufl.edu/media/animalifasufledu/hansen-lab-website/lab-protocols/Laboratory-Guide-for-Production-of-Bovine-Embryos-In-Vitro-ver-06.28.2023.pdf
Instituto Nacional de Estadística y Censos (INEC). (2015). VI Censo Nacional Agropecuario. https://admin.inec.cr/sites/default/files/media/reagropeccenagro2014-002_0_3.pdf
Izquierdo, D., Catalá, M. G., & Paramio, M. T. (2019). Small ruminants: Prepubertal oocyte donors. In Methods in Molecular Biology (Vol. 2006, pp. 155–163). https://doi.org/10.1007/978-1-4939-9566-0_11
Khatun, M., Bhuiyan, M. M., Ahmed, J. U., Haque, A., Rahman, M. B., & Shamsuddin, M. (2011). In vitro maturation and fertilization of prepubertal and pubertal black Bengal goat oocytes. Journal of Veterinary Science, 12(1), 75–82. https://doi.org/10.4142/jvs.2011.12.1.75
Leoni, G. G., Palmerini, M. G., Satta, V., Succu, S., Pasciu, V., Zinellu, A., Carru, C., Macchiarelli, G., Nottola, S. A., Naitana, S., & Berlinguer, F. (2015). Differences in the kinetic of the first meiotic division and in active mitochondrial distribution between prepubertal and adult oocytes mirror differences in their developmental competence in a sheep model. PLoS ONE, 10(4), e0124911. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0124911
Maroto, R., Jiménez, A. E., Romero, J. J., Álvarez, V., De Oliveira, J. B., & Hernández, J. (2011). First report of anthelmintic resistance in gastrointestinal nematodes of sheep from Costa Rica. Veterinary Medicine International, 2011, 1–4. https://doi.org/10.4061/2011/145312
Mermillod, P., Dalbies-Tran, R., Uzbekova, S., Thelie, A., Traverso, J. M., & Perreau, C., et al. (2008). Factors affecting oocyte quality: Who is driving the follicle? Reproduction in Domestic Animals, 43, 393–400. https://doi.org/10.1111/j.1439-0531.2008.01190.x
Mishra, A., Reddy, I. J., Gupta, P. S. P., & Mondal, S. (2016). Developmental regulation and modulation of apoptotic genes expression in sheep oocytes and embryos cultured in vitro with L-carnitine. Reproduction in Domestic Animals, 51, 1020–1029. https://doi.org/10.1111/rda.12789
Mondal, S., Mor, A., Reddy, I. J., Nandi, S., Gupta, P. S. P., & Mishra, A. (2019). In vitro embryo production in sheep. In J. R. Herrik (Ed.), Comparative Embryo Culture (pp. 131–140). Humana Press. https://doi.org/10.1007/978-1-4939-9566-0_9
Naitana, S., & Ledda, S. (2020). Reproductive technologies in sheep. In G. A. Presicce (Ed.), Reproductive Technologies in Animals. Academic Press. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-817107-3.00003-5
Paramio, M. T., & Izquierdo, D. (2016). Recent advances in in vitro embryo production in small ruminants. Theriogenology, 86(1), 152–159. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2016.04.027
Sen, A., & Caiazza, F. (2013). Oocyte maturation: A story of arrest and release. Frontiers in Bioscience (Schol Ed), 5(2), 451–477. https://doi.org/10.2741/S383
Servicio Nacional de Salud Animal (SENASA). (2017). Requisitos sanitarios para importación de semen, embriones y óvulos (DCA-PG-006). Retrieved from file:///C:/Users/FIV-REPRODUCCION-EMV/Dropbox/PC%20(2)/Downloads/Guia%20Importacion%20DCA-2.pdf
Shabankareh, H. K., Kafilzadeh, F., & Soltani, L. (2012). Treatment of ovine oocytes with certain water-soluble vitamins during in vitro maturation (IVM). Small Ruminant Research, 104, 139–145. https://doi.org/10.1016/j.smallrumres.2011.09.050
Shabankareh, H. K., & Zandi, M. (2010). Developmental potential of sheep oocytes cultured in different maturation media: Effects of epidermal growth factor, insulin-like growth factor I, and cysteamine. Fertility and Sterility, 94, 335–340. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2009.01.160
Souza-Fabjan, J. M. G., Batista, R. I. T. P., Correia, L. F. L., Paramio, M. T., Fonseca, J. F., Freitas, V. J. F., & Mermillod, P. (2021). In vitro production of small ruminant embryos: Latest improvements and further research. Reproduction, Fertility, and Development, 33(2), 31–54. https://doi.org/10.1071/RD20206
Souza-Fabjan, J. M. G., Locatelli, Y., Duffard, N., Corbin, E., Batista, R. I. T. B., Freitas, V. J. F., Beckers, J. F., & Mermillod, P. (2016). Intrinsic quality of goat oocytes already found denuded at collection for in vitro embryo production. Theriogenology, 86(8), 1989–1998. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2016.06.021
Souza-Fabjan, J. M. G., Panneau, B., Duffard, N., Locatelli, Y., Figueiredo, J. R., de Figueirêdo Freitas, V. J., & Mermillod, P. (2014). In vitro production of small ruminant embryos: Late improvements and further research. Theriogenology, 81, 1149–1162. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2014.02.001
Teixeira, P. P., Padilha, L. C., Oliveira, M. E., Motheo, T. F., da Silva, A. S., & Barros, F. F. (2011). Laparoscopic ovum collection in sheep: Gross and microscopic evaluation of the ovary and influence on oocyte production. Animal Reproduction Science, 127(1–2), 169–175. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2011.08.001
Publicado
Número
Sección
Licencia
Derechos de autor 2025 Natalia Soto Barrientos, Marcela Suárez Esquivel, Laura Castro Ramírez
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0.
Todos los artículos de la Revista Agro se publican bajo la licencia Creative Commons Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0 Internacional (CC BY-NC-SA 4.0).
